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[资源] 先天性肌无力综合征

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发表于 2019-1-8 00:05:51 | 显示全部楼层 |阅读模式
先天性肌无力综合征(CMS)是一种遗传性神经肌肉疾病,由神经肌肉接头处的几种类型的缺陷引起。该疾病的影响类似于Lambert-Eaton综合征和重症肌无力,不同之处在于CMS不是自身免疫性疾病。

目录
1 分类
2 介绍
3 机制
3.1 突触后CMS
4 诊断和治疗
5 参考

分类
CMS的类型分为三类:突触前,突触后和突触。

突触前症状包括呼吸短暂停止,眼睛,嘴和喉部肌肉无力。这些症状通常导致双重视力和难以咀嚼和吞咽。
婴儿的突触后症状包括严重的肌肉无力,进食和呼吸问题,以及坐,爬,走的能力延迟。
突触症状包括儿童早期喂养和呼吸问题,活动能力下降,脊柱弯曲和虚弱,导致运动里程碑延迟。

介绍
所有年龄段的发病症状可能包括下垂的眼睑。一种特殊形式的突触后CMS(慢通道CMS)包括从婴儿期或儿童期开始的严重虚弱,其进展并导致青春期或以后的生活中丧失活动性和呼吸问题。

机制
突触后CMS
CMS与影响神经肌肉接头蛋白质的遗传缺陷有关。突触后缺陷是CMS的最常见原因,并且经常导致乙酰胆碱受体(AChR)的异常。在神经肌肉接头中,存在维持突触结构并导致AChR在突触后褶皱上聚集和定位的重要途径。该途径由集聚蛋白,肌肉特异性酪氨酸激酶(MuSK),乙酰胆碱受体(AChRs)和由RAPSN基因编码的AChR-聚集蛋白rapsyn组成。导致CMS的绝大多数突变发现于AChR亚基和rapsyn基因[1]。

在与CMS相关的所有突变中,超过一半是编码成人乙酰胆碱受体(AChR)亚基的四种基因之一中的突变。 AChR的突变通常导致终板缺乏。 AChR的大多数突变是CHRNE基因的突变。 CHRNE基因编码AChR的epsilon亚基。大多数突变是常染色体隐性功能丧失突变,因此存在终板AChR缺陷。 CHRNE与改变AChR的动力学特性有关。[2] AChR的ε亚基的一种突变将精氨酸引入受体的α/ε亚基界面处的结合位点。在AChR结合位点的阴离子环境中加入阳离子Arg大大降低了受体的动力学性质。新引入的Arg的结果是激动剂亲和力降低30倍,门控效率降低75倍,通道开放概率极度减弱。这种类型的突变导致了一种极其致命的CMS形式。[3]

CMS的另一个常见潜在机制是由RAPSN基因编码的rapsyn蛋白的突变。 Rapsyn直接与AChRs相互作用,并在集聚蛋白诱导的AChR聚类中起着至关重要的作用。如果没有rapsyn,则无法创建功能性突触,因为折叠不能正确形成。具有CMS相关的rapsyn蛋白突变的患者通常对于N88K是纯合的或对于N88K是杂合的并且是第二突变。在rapsyn中突变N88K的主要作用是降低AChR簇的稳定性。第二个突变可能是疾病严重程度的决定因素。[1]

研究表明,大多数具有rapsyn突变的CMS患者在至少一个等位基因上携带共同突变N88K。然而,研究表明,有少数患者在其任一等位基因上不携带N88K突变,而是在其两个等位基因上编码rapsyn的RAPSN基因的不同突变。已经发现的两个新的错义突变是R164C和L283P,结果是AChR与raspyn的共聚集减少。第三个突变是内含子碱基改变IVS1-15C> A,它引起RAPSN RNA的异常剪接。这些结果表明,RAPSN基因的CMS突变的诊断筛查不能完全基于N88K突变的检测[4]

Dok-7是一种突触后蛋白,可以结合并激活MuSK蛋白,从而导致AChR聚集和突触后膜的典型折叠。 Dok-7的突变是突触后CMS的另一个潜在机制。[5]

诊断和治疗
先天性肌无力综合征(CMS)“通常难以诊断,因为广泛的鉴别诊断和缺乏特定的实验室检查结果。潜在突变的鉴定至关重要,因为某些突变会导致治疗反应性疾病,而其他突变则不会。”[6]整个外显子组测序(WES)通常用作诊断工具,允许“启动特定治疗”。[6]

治疗取决于疾病的形式(类别)。虽然症状与重症肌无力相似,但MG中使用的治疗方法在CMS中无用。 MG用免疫抑制剂治疗,但CMS不是自身免疫疾病。相反,CMS是遗传的并且对其他形式的药物治疗有反应。

一种形式的突触前CMS是由乙酰胆碱(ACh)释放不足引起的,并用胆碱酯酶抑制剂治疗。

突触后快速通道CMS(ACh受体不能长时间保持开放)用胆碱酯酶抑制剂和3,4-二氨基吡啶治疗[7] [8]。在美国,更稳定的3,4-二氨基吡啶磷酸盐盐(盐酸氨基吡啶)的配方正在开发中作为CMS的孤儿药,并且根据Catalyst Pharmaceuticals的扩展获取计划免费提供给符合条件的患者。[9] [10] [11] [12] [13]

突触后慢通道CMS用奎尼丁或氟西汀治疗,其插入ACh受体。

麻黄碱已在临床试验中对患者进行了测试,似乎是DOK7 CMS的有效治疗方法。大多数患者耐受这种类型的治疗,强度的提高可以令人印象深刻。必须进行进一步的研究,以确定麻黄碱的长期反应以及最有效的剂量方案。麻黄碱可以导致肌肉力量的显着改善,并且对日常功能产生更显着的影响。麻黄碱的作用被推迟,并且在几个月内发生了改善。[5]麻黄碱的剂量为15至90毫克/天,因此肌肉力量得到改善[14]

另见
Congenital disorder
Myasthenia gravis
Lambert-Eaton syndrome

参考:
Cossins, J.; Burke, G.; Maxwell, S.; Spearman, H.; Man, S.; Kuks, J.; Vincent, A.; Palace, J.; Fuhrer, C.; Beeson, D. (2006). "Diverse molecular mechanisms involved in AChR deficiency due to rapsyn mutations". Brain. 129 (10): 2773–2783. doi:10.1093/brain/awl219. PMID 16945936.
Abicht, A.; Dusl, M.; Gallenmüller, C.; Guergueltcheva, V.; Schara, U.; Della Marina, A.; Wibbeler, E.; Almaras, S.; Mihaylova, V.; Von Der Hagen, M.; Huebner, A.; Chaouch, A.; Müller, J. S.; Lochmüller, H. (2012). "Congenital myasthenic syndromes: Achievements and limitations of phenotype-guided gene-after-gene sequencing in diagnostic practice: A study of 680 patients". Human Mutation. 33 (10): 1474–1484. doi:10.1002/humu.22130. PMID 22678886.
Shen, X. -M.; Brengman, J. M.; Edvardson, S.; Sine, S. M.; Engel, A. G. (2012). "Highly fatal fast-channel syndrome caused by AChR subunit mutation at the agonist binding site". Neurology. 79 (5): 449–454. doi:10.1212/WNL.0b013e31825b5bda. PMC 3405251. PMID 22592360.
Muller, J. S.; Baumeister, S. K.; Rasic, V. M.; Krause, S.; Todorovic, S.; Kugler, K.; Müller-Felber, W.; Abicht, A.; Lochmüller, H. (2006). "Impaired receptor clustering in congenital myasthenic syndrome with novel RAPSN mutations". Neurology. 67 (7): 1159–1164. doi:10.1212/01.wnl.0000233837.79459.40. PMID 16931511.
Palace, J. (2012). "DOK7 congenital myasthenic syndrome". Annals of the New York Academy of Sciences. 1275: 49–53. doi:10.1111/j.1749-6632.2012.06779.x. PMID 23278577.
Alvin Das; Dimitri Agamanolis; Bruce Cohen (8 April 2014). "Use of Next-Generation Sequencing as a Diagnostic Tool for Congenital Myasthenic Syndrome". Neurology. 51 (10): 717–20. doi:10.1016/j.pediatrneurol.2014.07.032. PMID 25194721. As with other rare childhood neurological conditions, CMS is often difficult to diagnose because of a broad differential diagnosis and lack of specific laboratory findings. Identification of the underlying mutation is critical, as certain mutations lead to treatment-responsive conditions while others do not. This case serves to highlight the importance of WES as a diagnostic tool that will assist in proper diagnosis, and in some circumstances, allow for initiation of specific treatment.
Engel AG, et al. (April 2015). "Congenital myasthenic syndromes: pathogenesis, diagnosis, and treatment". Lancet Neurol. 14 (4): 420–34. doi:10.1016/S1474-4422(14)70201-7. PMC 4520251. PMID 25792100.
Engel AG, et al. "New horizons for congenital myasthenic syndromes". Ann N Y Acad Sci. 1275: 1275:54–62. doi:10.1111/j.1749-6632.2012.06803.x. PMC 3546605. PMID 23278578.
Raust, JA; et al. (2007). "Stability studies of ionised and non-ionised 3,4-diaminopyridine: hypothesis of degradation pathways and chemical structure of degradation products". J Pharm Biomed Anal. 43: 83–8. doi:10.1016/j.jpba.2006.06.007. PMID 16844337.
http://www.ema.europa.eu/docs/en ... 032/WC500069918.pdf
[1]
[2], Muscular Dystrophy Association Press Release
[3], Rare Disease Report
Lashley, D.; Palace, J.; Jayawant, S.; Robb, S.; Beeson, D. (2010). "Ephedrine treatment in congenital myasthenic syndrome due to mutations in DOK7". Neurology. 74 (19): 1517–1523. doi:10.1212/WNL.0b013e3181dd43bf. PMC 2875925. PMID 20458068.
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